SDS-Page电泳,我配的胶总是不凝固配方是这样的:ACR-BIS 4ml tris-hcl (ph8.9)3.8ml 10% sds 0.1ml 水 2ml过硫酸铵是现配的 浓度10% 我一开始加的是50ul,试了一次不行,加到了200ul,TEMED 最多加到了100u,可还

来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/05/10 09:21:30
SDS-Page电泳,我配的胶总是不凝固配方是这样的:ACR-BIS 4ml tris-hcl (ph8.9)3.8ml 10% sds 0.1ml 水 2ml过硫酸铵是现配的 浓度10% 我一开始加的是50ul,试了一次不行,加到了200ul,TEMED 最多加到了100u,可还

SDS-Page电泳,我配的胶总是不凝固配方是这样的:ACR-BIS 4ml tris-hcl (ph8.9)3.8ml 10% sds 0.1ml 水 2ml过硫酸铵是现配的 浓度10% 我一开始加的是50ul,试了一次不行,加到了200ul,TEMED 最多加到了100u,可还
SDS-Page电泳,我配的胶总是不凝固
配方是这样的:
ACR-BIS 4ml
tris-hcl (ph8.9)3.8ml
10% sds 0.1ml
水 2ml
过硫酸铵是现配的 浓度10% 我一开始加的是50ul,试了一次不行,加到了200ul,TEMED 最多加到了100u,可还是不凝固,
除了过硫酸铵和TEMED,可能会是其他成分有问题吗?
我昨天用同样的配方做胶,大约1小时凝固了.今天却两三小时也不凝,放在37度培养箱也没用,过硫酸铵是今天新配的,其他都是昨天的试剂.真是奇了怪了啊

SDS-Page电泳,我配的胶总是不凝固配方是这样的:ACR-BIS 4ml tris-hcl (ph8.9)3.8ml 10% sds 0.1ml 水 2ml过硫酸铵是现配的 浓度10% 我一开始加的是50ul,试了一次不行,加到了200ul,TEMED 最多加到了100u,可还
那聚丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺 浓度是多少,会不会是它的问题.

为何新配的各种溶液,而SDS-PAGE电泳分离胶不凝固? SDS-Page电泳,我配的胶总是不凝固配方是这样的:ACR-BIS 4ml tris-hcl (ph8.9)3.8ml 10% sds 0.1ml 水 2ml过硫酸铵是现配的 浓度10% 我一开始加的是50ul,试了一次不行,加到了200ul,TEMED 最多加到了100u,可还 SDS-page 胶过夜保存我跑SDS-page电泳,做蛋白纯度的检测,染完色后直接观察就行.请问跑完电泳以后可以不染色放在4度冰箱保存,过两天再染色吗? sds-page电泳的分离胶凹凸不平怎么回事 sds-page电泳中甘油的作用 SDS-PAGE电泳的应用有哪些? SDS-PAGE电泳的原理是什么? SDS-PAGE电泳的工作原理 sds-page电泳为什么用浓缩胶 SDS-PAGE 电泳烧胶问题是怎么回事 SDS-PAGE制胶时总是凝固的很快,加TEMED太少又担心不凝固,谁遇到过同样的情况 下列有关核酸电泳和SDS-PAGE电泳说法错误的是 A. 核酸电泳和SDS-PAGE电泳中DNA和蛋白均向正极泳动;B. SDS-PAGE不连续垂直电泳中,上层是分离胶,下层是浓缩胶;C. RNA分离需要变性条件下的 关于SDS-PAGE电泳小弟最近在做SDS-PAGE,发现了一些问题1.胶凝固后会缩一点点,导致加样孔变浅2.两边的两个孔加样后跑出来的条带不直不知是否正常,如果不正常问题可能是什么原因造成的不要 SDS-PAGE我现在走的小电泳,每次溴酚蓝前沿走到距离胶底部2厘米处就一直走不下去了,而且此时在电泳槽内槽底部的外壁总是开始产生气泡(电泳前原本有的已经赶调).请问这是什么原因造成 如果蛋白的分子量大约是180,SDS-PAGE电泳分离胶的浓度配制多少才合适呢?我用的是凯基SDS-PAGE电泳凝胶配制试剂盒 sds-page蛋白电泳图怎么是这个样子.我制胶的时候就摇了摇而已啊? SDS-PAGE胶不凝我配的是12%的胶,但是不凝固,加水封闭的时候能够清晰地分层!这是什么原因造成的啊?AP我是现配的! SDS PAGE 电泳为什么会跑歪?