作业帮Takara胶回收试剂盒 说明书,具体操作步骤Takara 胶回收试剂盒的说明书,也就是里面的具体操作步骤,供写论文用.
来源：学生作业帮助网 编辑：作业帮 时间：2024/05/04 08:05:39
Takara胶回收试剂盒 说明书,具体操作步骤Takara 胶回收试剂盒的说明书,也就是里面的具体操作步骤,供写论文用.
Takara胶回收试剂盒 说明书,具体操作步骤
Takara 胶回收试剂盒的说明书,也就是里面的具体操作步骤,供写论文用.
Takara胶回收试剂盒 说明书,具体操作步骤Takara 胶回收试剂盒的说明书,也就是里面的具体操作步骤,供写论文用.
1.琼脂糖凝胶电泳分离DNA片段,任何类型或等级的琼脂糖都可以使用.我们强烈的建议您使用新鲜的TAE Buffer作为电泳缓冲液.不要重复使用电泳缓冲液,因为会因其PH的升高而减少产量.新鲜的TBE也可以用,但只能得到较低的产量.
2.当所需DNA片段完全分离时,转移凝胶至紫外灯上,尽可能快地把所需的DNA片段切下来.
注:切胶时尽量把多余的凝胶切去,DNA曝露在紫外灯下不能超过30秒.
3.将带有目的片段的凝胶块转移至1.5ml离心管(离心管已经称重了)中,称重得出凝胶块的重量.近似地确定其体积.假设其密度为1g/ml(几乎所有DNA凝胶的密度都可以近似为1g/ml),于是凝胶块的体积便可通过如下方法得到:凝胶薄片的重量为0.2g,则其体积为
0.2 ml.加入等体积的Binding Buffer(XP2),于55-65℃水浴中温浴7min或至凝胶完全融化,每2-3 min振荡或涡旋混合物.
重要提醒:在凝胶完全溶解之后,注意凝胶-Binding buffer混和物的pH值.如果其pH值大于8的话,DNA的产量将大大减少.观察混和物的颜色,如果是橙色或红色,则要加入5 ul 浓度为5 M,pH为5.2的醋酸钠,以调低其pH值.经过这一调节,该混合物的颜色将恢复为正常的浅黄色.
4.取一个干净的HiBind DNA Mini柱子装在一个干净的2ml收集管内(已备好).
5.将第三步获得的DNA/熔胶液全部转移至柱子中.室温下10,000 x g离心1分钟.弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内.
6.如果DNA/凝胶熔液的体积超过700ul,一次只能转移700ul至柱子中,余下的可继续重复第5步至所有的溶液都经过柱子.每一个Hibind DNA回收纯化柱都有一个极限为25gDNA的吸附能力.如果预期产量较大,则把样品分别加到合适数目的柱子中.
7.弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内.移300ul Binding Buffer(XP2)至柱子中,室温下,10,000 x g下离心1min.
8.弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内.移700ul SPW Wash buffer(已用无水乙醇稀释的)至柱子中.室温下10,000xg离心1min.
注意:浓缩的SPW Wash Buffer 在使用之前必须按标签的提示用乙醇稀释.如果DNA 洗涤缓冲液在使用之前是置于冰箱中的,须将其拿出置于室温下.
9.重复用700ul SPW Wash buffer洗涤柱子.室温下10,000xg离心1min.
10.弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内.室温下,13,000 x g离心2 min以甩干柱子基质残余的液体.
11.把柱子装在一个干净的1.5ml离心管上,加入15~30ul(具体取决于预期的终产物浓度)的Elution Buffer(或TE缓冲液)到柱基质上,室温放置1min,13,000xg离心1min以洗脱DNA.
第一次洗脱可以洗出70-80%的结合DNA.如果再洗脱一次的话,可以把残余的DNA洗脱出来,不过那样的浓度就会较低.